穀胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)
試劑盒說明書(shu)
紫外分光光度法
注意:正是測定之前選擇2-3個(ge) 預期差異大的樣本做預測定。
產(chan) 品內(nei) 容:
試劑一:液體(ti) ×1 瓶,4℃保存。
試劑二:粉劑×1 瓶,4℃保存。
試劑三:液體(ti) ×1 支,-20℃保存。
混合試劑配製:臨(lin) 用前,在試劑二中加入試劑一40 mL,充分震蕩溶解後加入全部試劑三,混勻。(注意:必須現配現用,當天使用完)
試劑四:液體(ti) ×1 瓶,4℃保存。
產(chan) 品說明:
GSH-Px 是穀胱甘肽氧化還原循環中催化還原型穀胱甘肽(GSH)氧化的主要酶之一。GSH-Px不僅(jin) 能夠特異地催化還原型穀胱甘肽與(yu) ROS反應,生成氧化型穀胱甘肽GSSG,從(cong) 而保護生物膜免受ROS 的損害,維持細胞的正常功能;而且具有保護肝髒、提高機體(ti) 免疫力、拮抗有害金屬離子對機體(ti) 的傷(shang) 害和增加機體(ti) 抗輻射等能力。
GSH-Px 催化H2O2氧化GSH,產(chan) 生GSSG;穀胱甘肽還原酶(GR)催化NADPH 還原GSSG,再生GSH,同時NADPH 氧化生成NADP+;NADPH 在340 nm有特征吸收峰,而NADP+沒有;通過測定340 nm光吸收減少速率來計算GSH-Px 活性。
自備儀(yi) 器和用品:
紫外分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調節移液器、1mL 石英比色皿和蒸餾水。
操作步驟:
一、粗酶液提取:
1. 組織:按照組織質量(g):試劑一體(ti) 積(mL)為(wei) 1:5~10 的比例(建議稱取0.1g 組織,加入1mL 試劑一)進行冰浴勻漿。10000rpm,4℃離心10min,取上清置冰上待測。
2. 細菌、真菌:按照細胞數量104個(ge) :試劑一體(ti) 積(ml)500~1000:1 的比例,建議500 萬(wan) 細胞加入1mL 試劑一),冰浴超聲波破碎細胞(率300w,超聲3 s,間隔7s,總時間3min)然後10000rpm,4℃,離心10min,取上清置冰上待測。
3. 血清等液體(ti) :直接測定。
二、測定操作:
1. 分光光度計預熱30 min,調節波長到340 nm,蒸餾水調零。
2. 混合試劑在25℃或者37℃(哺乳動物)水浴中預熱30min 以上。
3. 空白管:依次在1mL石英比色皿中加入100μL 蒸餾水、800μL 預熱的混合試劑,100μL試劑四,迅速混勻後於(yu) 340nm處測定第10 s和第190s的吸光值,分別記為(wei) A空1和A空2,△A 空白管= A空1﹣A空2。
4. 測定管:依次在1mL 石英比色皿中加入100μL 上清液、800μL 預熱的混合試劑,100μL試劑四,迅速混勻後於(yu) 340nm 處測定第10 s和第190s 的吸光值,分別記為(wei) A測1 和A測2,△A 測定管= A測1﹣A測2。
注意:空白管隻需測定一次。
三、GSH-Px 活性計算:
(1). 按蛋白濃度計算
GSH-Px 活力單位定義(yi) :一定溫度中,每 mg 蛋白每分鍾催化1nmol NADPH 氧化為(wei) 1個(ge) 酶活單位。
GSH-Px (U/mg prot)=[(△A 測定管-△A 空白管)÷ε÷d×V 反總×109]÷( Cpr×V 樣)÷T
=536×(△A 測定管-△A 空白管)÷Cpr
(2). 按樣本質量計算
GSH-Px 活力單位定義(yi) :一定溫度中,每g 樣本每分鍾催化1nmol NADPH 氧化為(wei) 1個(ge) 酶活單位。
GSH-Px (U/g)=[(△A 測定管-△A 空白管)÷ε÷d×V 反總×109]÷(W×V 樣÷V樣總)÷T
=536×(△A 測定管-△A 空白管)÷W
(3). 按細胞數量計算
GSH-Px 活力單位定義(yi) :一定溫度中,每104個(ge) 細胞每分鍾催化1nmol NADPH 氧化為(wei) 1個(ge) 酶活單位。
GSH-Px (U/104 cell)=[(△A測定管-△A空白管)÷ε÷d×V反總×109]÷(細胞數量×V樣÷V樣總)÷T
=536×(△A測定管-△A空白管)÷細胞數量
(4). 按液體(ti) 體(ti) 積計算
GSH-Px 活力單位定義(yi) :一定溫度中,每毫升液體(ti) 每分鍾催化1nmol NADPH 氧化為(wei) 1個(ge) 酶活單位。
GSH-Px (U/ml)=[(△A測定管-△A空白管)÷ε÷d×V 反總×109]÷V 樣÷T
=536×(△A測定管-△A空白管)
ε:NADPH 摩爾消光係數6.22×103L/mol/cm;V 反總:反應體(ti) 係總體(ti) 積,1000μL=0.001 L;
106:1mol=1×106μmol; Cpr:上清液蛋白濃度(mg/mL);V 樣:加入反應體(ti) 係中上清液體(ti) ,100μL =0.1 mL;V 樣總:加入提取液體(ti) 積,1mL;W,樣本質量,g;T:反應時間,3min。
注意事項:
1. 樣品處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力。
2. 混合試劑和底物液須臨(lin) 用前配製,配完後置於(yu) 冰上,當天使用完。
3. 測定過程操作須迅速。
4. 細胞中GSH-Px 活性測定時,細胞數目須在300 萬(wan) -500 萬(wan) 之間,細胞中GSH-Px 的提取時可加試劑一後研磨或超聲波處理,不能用細胞裂解液處理細胞。
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