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穀胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px) 試劑盒說明書
點擊次數:3136 更新時間:2020-09-04

穀胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)

試劑盒說明書(shu)

紫外分光光度法

注意:正是測定之前選擇2-3個(ge) 預期差異大的樣本做預測定。

產(chan) 品內(nei) 容

試劑一:液體(ti) ×1 瓶,4保存。

試劑二:粉劑×1 瓶,4保存。

試劑三:液體(ti) ×1 支,-20保存。

混合試劑配製:臨(lin) 用前,在試劑二中加入試劑一40 mL,充分震蕩溶解後加入全部試劑三,混勻。(注意:必須現配現用,當天使用完

試劑四:液體(ti) ×1 瓶,4保存。

產(chan) 品說明:

GSH-Px 是穀胱甘肽氧化還原循環中催化還原型穀胱甘肽(GSH)氧化的主要酶之一。GSH-Px不僅(jin) 能夠特異地催化還原型穀胱甘肽與(yu) ROS反應,生成氧化型穀胱甘肽GSSG,從(cong) 而保護生物膜免受ROS 的損害,維持細胞的正常功能;而且具有保護肝髒、提高機體(ti) 免疫力、拮抗有害金屬離子對機體(ti) 的傷(shang) 害和增加機體(ti) 抗輻射等能力。

GSH-Px 催化H2O2氧化GSH,產(chan) 生GSSG;穀胱甘肽還原酶(GR)催化NADPH 還原GSSG,再生GSH,同時NADPH 氧化生成NADP+NADPH 340 nm有特征吸收峰,而NADP+沒有;通過測定340 nm光吸收減少速率來計算GSH-Px 活性。

自備儀(yi) 器和用品:

紫外分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調節移液器、1mL 石英比色皿和蒸餾水。

操作步驟:

一、粗酶液提取:

1. 組織:按照組織質量(g:試劑一體(ti) 積(mL)為(wei) 15~10 的比例(建議稱取0.1g 組織,加入1mL 試劑一)進行冰浴勻漿。10000rpm4離心10min,取上清置冰上待測。

2. 細菌、真菌:按照細胞數量104個(ge) :試劑一體(ti) 積(ml500~1000:1 的比例,建議500 萬(wan) 細胞加入1mL 試劑一),冰浴超聲波破碎細胞(率300w,超聲3 s,間隔7s,總時間3min)然後10000rpm4,離心10min,取上清置冰上待測。

3. 血清等液體(ti) :直接測定。

二、測定操作:

1. 分光光度計預熱30 min,調節波長到340 nm,蒸餾水調零。

2. 混合試劑在25或者37(哺乳動物)水浴中預熱30min 以上。

3. 空白管:依次在1mL石英比色皿中加入100μL 蒸餾水、800μL 預熱的混合試劑,100μL試劑四,迅速混勻後於(yu) 340nm處測定第10 s和第190s的吸光值,分別記為(wei) A1A2,A 空白管= A1A2

4. 測定管:依次在1mL 石英比色皿中加入100μL 上清液、800μL 預熱的混合試劑,100μL試劑四,迅速混勻後於(yu) 340nm 處測定第10 s和第190s 的吸光值,分別記為(wei)  A1 A2A 測定管= A1A2

注意:空白管隻需測定一次。

三、GSH-Px 活性計算:

(1). 按蛋白濃度計算

GSH-Px 活力單位定義(yi) :一定溫度中,每 mg 蛋白每分鍾催化1nmol NADPH 氧化為(wei) 1個(ge) 酶活單位。

GSH-Px (U/mg prot)=[(A 測定管-A 空白管)÷ε÷d×V 反總×109 Cpr×V 樣)÷T

=536×(A 測定管-A 空白管)÷Cpr

(2). 按樣本質量計算

GSH-Px 活力單位定義(yi) :一定溫度中,每g 樣本每分鍾催化1nmol NADPH 氧化為(wei) 1個(ge) 酶活單位。

GSH-Px (U/g)=[(A 測定管-A 空白管)÷ε÷d×V 反總×109W×V ÷V樣總)÷T

=536×(A 測定管-A 空白管)÷W

(3). 按細胞數量計算

GSH-Px 活力單位定義(yi) :一定溫度中,每104個(ge) 細胞每分鍾催化1nmol NADPH 氧化為(wei) 1個(ge) 酶活單位。

GSH-Px (U/104 cell)=[(A測定管-A空白管)÷ε÷d×V反總×109(細胞數量×V÷V樣總)÷T

=536×(A測定管-A空白管細胞數量

(4). 按液體(ti) 體(ti) 積計算

GSH-Px 活力單位定義(yi) :一定溫度中,每毫升液體(ti) 每分鍾催化1nmol NADPH 氧化為(wei) 1個(ge) 酶活單位。

GSH-Px (U/ml)=[(A測定管-A空白管)÷ε÷d×V 反總×109]÷V ÷T

=536×(A測定管-A空白管)

ε:NADPH 摩爾消光係數6.22×103L/mol/cmV 反總:反應體(ti) 係總體(ti) 積,1000μL=0.001 L

1061mol=1×106μmol Cpr:上清液蛋白濃度(mg/mL);V 樣:加入反應體(ti) 係中上清液體(ti) ,100μL =0.1 mLV 樣總:加入提取液體(ti) 積,1mLW,樣本質量,gT:反應時間,3min

注意事項:

1. 樣品處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力。

2. 混合試劑和底物液須臨(lin) 用前配製,配完後置於(yu) 冰上,當天使用完。

3. 測定過程操作須迅速。

4. 細胞中GSH-Px 活性測定時,細胞數目須在300 萬(wan) -500 萬(wan) 之間,細胞中GSH-Px 的提取時可加試劑一後研磨或超聲波處理,不能用細胞裂解液處理細胞。

 

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