動物組織/細胞RNA提取試劑盒（DNase I）說明書(shu)

RNApure Tissue Kit（DNase I）

動物組織/細胞RNA提取試劑盒（DNase I）

目錄號：K0560

保存：DNase I、10×Reaction Buffer：-20℃

       其它組分：室  溫

組分說明

     Cat.No.                         K0560

     KitSize                           50

     DNaseI                         1000U

     10×ReactionBuffer           1000μl

     BufferRL                       35ml

     BufferRW1                     40ml

     BufferRW2（concentrate）   11ml

     RNase-FreeWater              10ml

     SpinColumnRM                 50

     CollectionTube（1.5ml）     50

     CollectionTube（2ml）     50

產(chan) 品簡介

     本試劑盒將高效的異硫氰酸胍裂解技術與(yu) 矽基質膜純化技術相結合，可從(cong) 動物細胞及組織中高效提取總 RNA。起始樣本一般最多 30mg 組織或 1x107   細胞。本試劑盒還可回收未*純化的 RNA、體(ti) 外轉錄和酶促反應後得到的 RNA。用本試劑盒可提取純化分子量大於(yu) 200 堿基的高品質 RNA，幾乎無 DNA 殘留。如果要進行對微量 DNA 非常敏感的 RNA 實驗，殘留的 DNA 可利用無 RNase 的 DNase 在柱上進行消化去除。提取的 RNA 可用於(yu) RT-PCR、NothernBlot、DotBlot等下遊實驗。

注意事項

1.  預防RNase汙染，應注意以下幾方麵：

    1）使用無RNase的塑料製品和槍頭，避免交叉汙染。

    2）玻璃器皿應在使用前於(yu) 180℃高溫下幹烤4小時，塑料器皿可在0.5MNaOH中浸泡10分鍾，用水*衝(chong) 洗後高壓滅菌。

    3）配製溶液應使用無RNase的水。

    4）操作人員戴一次性口罩和手套，實驗過程中要勤換手套。

2.  提取的樣品避免反複凍融，否則影響 RNA 提取的量和質量。

3.  BufferRL 在使用前請加入β-巰基乙醇，1mlBufferRL 加 10μl β-巰基乙醇。加入β-巰基乙醇的 BufferRL 室溫可保存1 個(ge) 月。

4.  第一次使用前應按照試劑瓶標簽的說明先在 BufferRW2 中加入無水乙醇。

5.  BufferRL 如果產(chan) 生沉澱，可於(yu) 56℃加熱使其溶解後室溫放置。

6.  所有離心步驟均在室溫下進行，且所有操作步驟動作要迅速。

自備試劑：  β-巰基乙醇、無水乙醇（新開封或提取RNA專(zhuan) 用）  

操作步驟

1.  樣品處理

    1a. 組織：將組織在液氮中磨碎。每20-30 mg組織加600  μl Buffer RL（使用前檢查是否加入β-巰基乙醇），組織樣本少於(yu) 20 mg加350  μl Buffer RL。樣品體(ti) 積不超過BufferRL體(ti) 積的十分之一。

1b 單層培養(yang) 細胞：將細胞在培養(yang) 瓶中直接裂解或處理成細胞懸液，離心得到細胞沉澱，棄上清，每6-10 cm ²培養(yang) 麵積加入600  μl Buffer RL，小於(yu) 6 cm² 加入350  μl Buffer RL，反複吹打幾次，使其充分裂解。

   1c. 細胞懸液：12,000rpm6（～13,400×g）離心1分鍾棄上清，得到細胞沉澱。每5×10⁶ -1×10⁷ 細胞加入600 μl Buffer RL ，少於(yu) 5×10⁶細胞加入350 μl Buffer RL，反複吹打幾次，使其充分裂解。

注意：1）盡量除盡細胞培養(yang) 基，細胞培養(yang) 基可能抑製細胞的裂解影響RNA產(chan) 量。

2）盡量使細胞充分懸浮並充分裂解，否則影響RNA產(chan) 量。

2.  樣品充分裂解後，室溫放置5分鍾，使蛋白核酸複合物*分離。

3.  12000rpm離心2-5min，取上清進行以下操作。

4.  向步驟3中得到的溶液中加入1倍體(ti) 積（600  μl 或350  μl）的70%乙醇（無RNase水配製），混勻。

   注意：加入乙醇後可能會(hui) 產(chan) 生沉澱，不會(hui) 影響後續實驗。

5.  將上步所得溶液全部加入到吸附柱（SpinColumnRM）中（吸附柱已裝入收集管CollectionTube中），若一次不能將全部溶液加入吸附柱中，請分兩(liang) 次轉入，12,000rpm離心1分鍾，棄廢液。將吸附柱放回收集管中。

    注意：吸附柱的最大載量為(wei) 100µg，不要超載，否則會(hui) 影響RNA的產(chan) 量和純度。

6.  向吸附柱中加入350  μl Buffer RW1，10,000rpm離心1分鍾，棄廢液，將吸附柱重新放回收集管中。

7.  配製DNaseI 混合液：取52 μl RNase-Free Water，向其中加入8  μl 10×Reaction Buffer 和20 μl DNase I（1U/μl），混勻，配製成終體(ti) 積為(wei) 80 μl的反應液。

8.  向吸附柱中直接加入80 µl DNase I  混合液，20-30℃孵育15分鍾。

9.  向吸附柱中加入350  μl Buffer RW1，10,000rpm離心1分鍾，棄廢液，將吸附柱重新放回收集管中。

10.  向吸附柱中加入500  μl Buffer  RW2（使用前檢查是否加入無水乙醇）,12,000rpm離心1分鍾，倒掉收集管中的廢

液，將吸附柱放回收集管中。

11.  重複步驟10。

12.  12,000rpm離心2分鍾，倒掉收集管中的廢液。將吸附柱置於(yu) 室溫數分鍾，以*晾幹。

   注意：這一步的目的是將吸附柱中殘餘(yu) 的乙醇去除，乙醇的殘留會(hui) 影響後續的酶促反應（酶切、PCR 等）。

13.  將吸附柱轉入新的RNase-Free的1.5ml 收集管中，向吸附膜中間位置加入30-50  μl RNase-Free Water，室溫放置1分鍾，12,000rpm離心1分鍾，收集RNA溶液，-70℃保存RNA，防止降解。

注意：1）RNase-FreeWate體(ti) 積不應小於(yu) 30 μl，體(ti) 積過小影響回收率。

2）如果要提高RNA的產(chan) 量，可用30-50 μl新的RNase-FreeWater重複步驟13。

3）如果要提高RNA濃度，可將得到的溶液重新加入到吸附柱中，重複步驟13。

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