C6+luc大鼠腦膠質瘤細胞熒光素酶標記
,C6luc
貨號:YJ-0088a
價(jia) 格: 3200.0
規格: 1*10 6
細胞介紹
膠質細胞株C6是由Benda等用N-nitrosomethylurea誘導的大鼠膠質瘤克隆,並經過一係列的體(ti) 外培養(yang) 和動物傳(chuan) 代交替後建成的。當細胞從(cong) 低密度生長到滿瓶時,S-100產(chan) 量增加10倍。該細胞通過慢病毒轉染的方式攜帶Luc基因。
細胞特性
1) 來源:大鼠,膠質瘤
2) 形態:成纖維細胞,貼壁生長
3) 含量:>1*10 6 細胞數
4) 規格:T25瓶或者1mL凍存管包裝
5) 用途:僅(jin) 供科研使用。
細胞篩選
該細胞為(wei) 穩定轉染Luc的細胞,隨細胞傳(chuan) 代次數的增加,其Luc熒光強度會(hui) 逐漸減弱。若實驗要求需要維持熒光強度,可以加入嘌呤黴素進行再次篩選。
建議收到細胞後至少傳(chuan) 3代,凍存留種後再進行篩選。
初次進行細胞篩選時,建議加入終濃度為(wei) 1ug/ml嘌呤黴素的完全培養(yang) 基維持培養(yang) ,若無細胞漂浮或者漂浮較少,即可更換為(wei) 含2ug/ml嘌呤黴素的完全培養(yang) 基繼續篩選,以此類推,至最高藥物濃度為(wei) 5ug/ml。若篩選過程中,漂浮細胞大於(yu) 60%,則停止篩選,換成正常培養(yang) 基培養(yang) ,至細胞密度約80%,可繼續加入同濃度嘌呤黴素進行篩選。當加入5ug/ml嘌呤黴素時細胞正常增殖,可停止篩選,用不含藥完全培養(yang) 基正常培養(yang) 。
一.培養(yang) 基及培養(yang) 凍存條件準備
1) 準備F12K 培養(yang) 基 (推薦:YJ-0007) 81.5 %,優(you) 質胎牛血清2.5 %,
馬血清(國產(chan) )(推薦:YJ-002b)15 %,P/S青黴素-鏈黴素1 %.
注:單一血清培養(yang) 細胞的不能保證細胞狀態。
2) 培養(yang) 條件: 氣相:空氣,95%;二氧化碳,5%。 溫度:37攝氏度,培養(yang) 箱濕度為(wei) 70%-80%。
3) 凍存液:90%血清,10%DMSO,現用現配。
二.細胞處理:
1) 凍存細胞的複蘇:
將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入到含4-6mL完全培養(yang) 基的離心管中混合均勻。在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,完全培養(yang) 基重懸細胞。然後將細胞懸液加入含6-8ml完全培養(yang) 基的培養(yang) 瓶(或皿)中37℃培養(yang) 過夜。第二天顯微鏡下觀察細胞生長情況和細胞密度。
2) 細胞傳(chuan) 代:如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳(chuan) 代培養(yang) 。
對於(yu) 貼壁細胞傳(chuan) 代可以參考以下方法:
1. 棄去培養(yang) 上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。
2. 加入0.25%(w / v)胰蛋白酶-0.53 mM EDTA於(yu) 培養(yang) 瓶中(T25瓶1-2mL,T75瓶2-3mL),置於(yu) 37℃培養(yang) 箱中消化1-2分鍾(難消化的細胞可以適當延長消化時間),然後在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓並脫落,迅速拿回操作台,輕敲幾下培養(yang) 瓶後加入3-4ml含10%FBS的培養(yang) 基來終止消化。
3.輕輕打勻後吸出,在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,補加1-2mL培養(yang) 液後吹勻。將細胞懸液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8ml按照說明書(shu) 要求配置的新的完全培養(yang) 基以保持細胞的生長活力,後續傳(chuan) 代根據實際情況按1:2~1:5的比例進行。
3)細胞凍存: 收到細胞後建議在培養(yang) 前3代時凍存一批細胞種子以備後續實驗使用。
下麵T25瓶為(wei) 例;
1. 細胞凍存時按照細胞傳(chuan) 代的過程收集消化好的細胞到離心管中,可使用血球計數板計數,來決(jue) 定細胞的凍存密度。一般細胞的推薦凍存密度為(wei) 1×106~1×107個(ge) 活細胞/ml.
2. 1000rpm離心3-5min,去掉上清。用配製好的細胞凍存液重懸細胞 ,按每1ml凍存液含1×106~1×107個(ge) 活細胞/ml分配到一個(ge) 凍存管中將細胞分配到凍存管中,標注好名稱、代數、日期等信息。
3. 將要凍存的細胞置於(yu) 程序降溫盒中,-80度冰箱中過夜,之後轉入液氮容器中儲(chu) 存。同時記錄好凍存管在液氮容器中的位置以便後續查閱和使用。
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