K7M2wt+luc小鼠骨肉瘤成骨細胞
,K7M2wt luc
貨號:YJ-0035a(K7M2wt種屬鑒定)
價(jia) 格: 3200.0
規格: 1*10 6
細胞介紹
抗原表達: CD31 陽性 [PubMed:1315100] 產(chan) 物: 八因子 [PubMed: 11315100]; 整合唾液酸蛋白 (BSP) [PubMed11315100]; biglyan [PubMed: 11315100]; decorrin [PubMed:1315100]; villin 2 (ezrin) [PubMed: 11325848]. 骨唾液酸蛋白, biglyan, decorrin, 和 osteopontin 的表達顯示其骨家族細胞特性。 在本庫通過支原體(ti) 檢測。
該細胞通過慢病毒轉染的方式攜帶Luc基因。
細胞特性
1) 來源:BALB/c 器官: 骨 疾病: 骨肉瘤 來源轉移灶: 肺 細胞類型: 成骨細胞;
2) 形態:成骨細胞 貼壁生長
3) 含量:>1x106 細胞數
4) 規格:T25瓶或者1mL凍存管包裝
5) 用途:僅(jin) 供科研使用。
細胞篩選
該細胞為(wei) 穩定轉染Luc的細胞,隨細胞傳(chuan) 代次數的增加,其Luc熒光強度會(hui) 逐漸減弱。若實驗要求需要維持熒光強度,可以加入嘌呤黴素進行再次篩選。
建議收到細胞後至少傳(chuan) 3代,凍存留種後再進行篩選。
初次進行細胞篩選時,建議加入終濃度為(wei) 1ug/ml嘌呤黴素的完全培養(yang) 基維持培養(yang) ,若無細胞漂浮或者漂浮較少,即可更換為(wei) 含2ug/ml嘌呤黴素的完全培養(yang) 基繼續篩選,以此類推,至最高藥物濃度為(wei) 5ug/ml。若篩選過程中,漂浮細胞大於(yu) 60%,則停止篩選,換成正常培養(yang) 基培養(yang) ,至細胞密度約80%,可繼續加入同濃度嘌呤黴素進行篩選。當加入5ug/ml嘌呤黴素時細胞正常增殖,可停止篩選,用不含藥完全培養(yang) 基正常培養(yang) 。
細胞接收後的處理
1)收到細胞後,75%酒精消毒瓶壁將T25瓶置於(yu) 37℃培養(yang) 箱放置約2-3h,若發現培養(yang) 瓶破損、有液溢出及細胞有汙染,請拍照後及時聯係我們(men) 。
2)請在4或5X顯微鏡下確認細胞狀態,同時給剛收到的細胞拍照(10×,20×)各2-3張以及培養(yang) 瓶外觀照片一張留存,作為(wei) 售後時收到時細胞狀態的依據。
3)貼壁細胞:細胞在37℃培養(yang) 箱中放置2-3h,顯微鏡下觀察細胞的生長和貼壁情況,有些貼壁細胞在快遞運送過程中會(hui) 因振動脫落和脫落後成團的情況。若鏡下觀察細胞的生長密度若在60%以下,可去除培養(yang) 瓶中灌液培養(yang) 基(若有未貼壁的細胞需要離心回收,重懸打入到原培養(yang) 瓶中),加入新配製的完全培養(yang) 基6-8mL,放到細胞培養(yang) 箱中繼續培養(yang) 。若細胞生長密度達70%-80%以上,可以對細胞進行傳(chuan) 代處理。傳(chuan) 代過程中,若因運輸振動脫落的細胞需要離心回收。
4)備注:運輸用的培養(yang) 基(灌液培養(yang) 基)不能再用來培養(yang) 細胞,請換用按照說明書(shu) 細胞培養(yang) 條件新配製的完全培養(yang) 基來培養(yang) 細胞。 收到細胞後第一次傳(chuan) 代建議T25培養(yang) 瓶1:2傳(chuan) 代 。
一.培養(yang) 基及培養(yang) 凍存條件準備:
1) 準備DMEM(推薦:YJ-0001)培養(yang) 基;優(you) 質胎牛血清,10%;雙抗,1%。
2) 培養(yang) 條件: 氣相:空氣,95%;二氧化碳,5%。 溫度:37攝氏度,培養(yang) 箱濕度為(wei) 70%-80%。
3) 凍存液:90%血清,10%DMSO,現用現配。
二.細胞處理:
1) 凍存細胞的複蘇:
將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入到含4-6mL完全培養(yang) 基的離心管中混合均勻。在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,完全培養(yang) 基重懸細胞。然後將細胞懸液加入含6-8ml完全培養(yang) 基的培養(yang) 瓶(或皿)中37℃培養(yang) 過夜。第二天顯微鏡下觀察細胞生長情況和細胞密度。
2) 細胞傳(chuan) 代:如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳(chuan) 代培養(yang) 。
對於(yu) 貼壁細胞傳(chuan) 代可以參考以下方法:
1. 棄去培養(yang) 上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。
2. 加入0.25%(w / v)胰蛋白酶-0.53 mM EDTA於(yu) 培養(yang) 瓶中(T25瓶1-2mL,T75瓶2-3mL),置於(yu) 37℃培養(yang) 箱中消化1-2分鍾(難消化的細胞可以適當延長消化時間),然後在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓並脫落,迅速拿回操作台,輕敲幾下培養(yang) 瓶後加入3-4ml含10%FBS的培養(yang) 基來終止消化。
3.輕輕打勻後吸出,在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,補加1-2mL培養(yang) 液後吹勻。將細胞懸液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8ml按照說明書(shu) 要求配置的新的完全培養(yang) 基以保持細胞的生長活力,後續傳(chuan) 代根據實際情況按1:2~1:5的比例進行。
3)細胞凍存: 收到細胞後建議在培養(yang) 前3代時凍存一批細胞種子以備後續實驗使用。
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