問題 | 可能原因 | 解決(jue) 方法 |
無顏色 | 試劑孵育的時間沒有按說明書(shu) 操作。 | 確定生物素化抗體(ti) ,聯接的hrp試劑或鏈黴親(qin) 和素-hrp使用的時間是否適當。 |
不同試劑盒或不同批號的試劑混用。 | 重新檢查試劑的標簽,確保所有組分都屬於(yu) 正使用的試劑盒。不能混用不同試劑盒或不同批號的試劑。 | |
漏加酶 | 檢查操作流程,注意不要漏加 | |
hrp酶汙染了疊氮鈉 | 使用新配製的試劑,禁含疊氮鈉 | |
標準品有問題(若在標本孔中有信號) | 按說明書(shu) 檢查標準品的配製過程 使用1瓶新標準品 | |
某一容器未洗淨,殘留滅活酶物質 | 盡可能用試劑盒內(nei) 容器,另覓一定要潔淨、可靠 | |
使用含血清的緩衝(chong) 液配製/複溶抗體(ti) | 重新確認所選用的試劑 | |
.漏加顯色劑a或b | 加顯色劑後觀察孔中液麵高度 | |
試劑配製/使用有誤 | 將實驗重做;嚴(yan) 格按說明書(shu) 操作,每次配製和使用前看清標簽。 | |
緩衝(chong) 液汙染 | 配製新鮮的緩衝(chong) 液 | |
顯色弱 | 超過有效期的產(chan) 品可能會(hui) 產(chan) 生很弱的信號。 | 檢查產(chan) 品的有效期 |
加入試劑的體(ti) 積和時間有誤 | 確定所使用的每一個(ge) 試劑的體(ti) 積正確和加入時間是適當。 | |
試劑、樣品用前未能平衡 | 用前試劑、樣品置室溫平衡10分鍾左右 | |
縮短孵育時間能使實驗的信號變弱。 | 檢查孵育的時間。 | |
在溫度變化的環境內(nei) 孵育酶標板。 | 確定孵育的溫度,應避免溫度的變化。 | |
使用了被汙染的試劑 | 檢查試劑是否被汙染。 | |
標準品/標本製備方法不規範 | 檢查標準品/標本的製備,標準品應按說明書(shu) 進行複溶和稀釋。低溫貯存的標本避免反複凍融,嚴(yan) 禁使用溶血標本。樣品用nan3防腐,抑製了酶的反應 | |
顯色底物製備不規範 | 檢查底物的製備,如體(ti) 積是否正確,混合是否恰當充分。 | |
檢測時間不當 | 是否在規定的時間內(nei) 檢測。 | |
儀(yi) 器設定不正確,濾光片不匹配。 | 儀(yi) 器是否設定正確,濾光片的選擇是否相符等。 | |
高背景(本底) | 洗滌操作不規範 | 洗板不充分,使用手工洗板常出現。使用洗板機,或使用洗瓶洗滌。每孔應*充滿洗滌緩衝(chong) 液,傾(qing) 出時應迅速。若使用洗板機,應校準並設定足夠充滿每孔的體(ti) 積量。板的內(nei) 側(ce) 不應接觸設備。 檢查每孔是否有殘留的洗液或每孔加樣量的體(ti) 積是否準確。在兩(liang) 次洗板之間加30秒的浸泡。 |
實驗中孵育溫度和時間不適當 | 確定每一實驗步驟的孵育溫度和時間是否適當 | |
酶加量過多 | 加酶前驗看移液器調節量是否準確。 檢查稀釋度,必要時需做效價(jia) 測定試驗。 | |
封閉不* | 檢查封閉液的計算量;延長封閉時間。 | |
標本或標準品中的幹擾物質 | 做適當的對照 | |
顯色劑受光照時間較長,或汙染 | 顯色劑a和b應於(yu) 使用前10分鍾從(cong) 冰箱取出 | |
整批樣品放置時間過長,樣品汙染 | 樣品應保持新鮮,或低溫保存,防止汙染 | |
緩衝(chong) 液汙染 | 製備新鮮的緩衝(chong) 液 | |
吸頭重複使用,未洗淨或消毒不*而用於(yu) 加酶或顯色劑 | 吸頭盡可能一次性使用 | |
太多的信號: 全部的板子變成規則的藍色 | 不充分的洗滌/洗滌步驟被遺漏-沒結合的過氧化物酶仍有殘留。 | 使用洗板機充分洗滌 檢查孔內(nei) 是否有殘留的洗液或加樣量是否準確。 |
底物溶液混合太早並轉成藍色 | 應控製底物混合的時機並立即使用 | |
太多的酶結合物 | 檢查稀釋度,必要時進行效價(jia) 測定 | |
封板膜或試劑容器被重複使用,導致hrp殘留,使tmb底物產(chan) 生非特異藍色。 | 使用新的封板膜,每步使用不同的試劑容器 | |
緩衝(chong) 液中汙染金屬或hrp | 製備新鮮緩衝(chong) 液 | |
高cv值(cv:coefficient of variation),花板 | 操作不慎或洗滌不充分 | 按說明書(shu) 洗板、加樣、顯色。洗板尤為(wei) 重要,如上所述 |
出現幹板,沒有使用封板膜、封板膜重複使用 | 確定每兩(liang) 步驟間,酶標板應保持濕潤。 使用封板膜封口,注意每步使用新的封板膜。 | |
由於(yu) 操作失誤或板子質量差(結合不均勻)造成包板不均勻。 | 稀釋用的pbs中不要加其它蛋白 檢查包被和封閉液體(ti) 積、時間和試劑加入的方法。 檢查所使用的酶標板,使用elisa板(不要使用組織培養(yang) 板) | |
移液器不準確,吸頭重複使用。 | 檢查並校準移液器。每次取樣必須換吸頭。回顧標本的加入步驟,確保每次加樣的準確性,保證吸取的液體(ti) 按所設定的體(ti) 積吸入和排出,連續加樣時注意檢查吸頭,確保所加液體(ti) 的體(ti) 積。 | |
樣品離心處理不全,反應孔內(nei) 發生凝血或殘留細胞成分 | 標本充分離心, 3000rpm 6分鍾以上,嚴(yan) 禁使用凝血(溶血)的標本 | |
緩衝(chong) 液汙染 | 製備新鮮的緩衝(chong) 液 | |
標準曲線可得到,但兩(liang) 點之間區別很差(低或平的曲線) | 酶結合物不足 | 檢查稀釋度,必要時進行效價(jia) 測定 |
捕獲抗體(ti) 沒有很好結合到板上 | 檢查所使用的酶標板,使用elisa板(不要使用組織培養(yang) 板) 稀釋用的pbs中不要加其它蛋白 | |
檢測抗體(ti) 不足 | 檢查稀釋度,必要時進行效價(jia) 測定 | |
板子顯色不足 | 延長底物孵育實驗 使用推薦品牌的底物溶液 | |
操作不慎 | 回顧elisa操作流程,消除任何擅自修改的程序。 | |
標準曲線稀釋度計算有誤 | 核查計算的情況,製備新的標準曲線 | |
標準曲線很好,但是沒有任何期望的陽性信號產(chan) 生 | 在標本中無相應的細胞因子 | 使用內(nei) 參對照 重複實驗,重新考慮實驗的相應參數 |
標本基質遮蓋檢測 | 將標本至少做1∶2相應的稀釋,或進行係列稀釋觀測它的恢複性 | |
標準曲線很好,但是標本的判讀值很高 | 標本中含的細胞因子水平超過檢測範圍 | 將標本做稀釋並再次實驗 |
當使用hrp酶結合物時,tmb底物加終止液後顯綠色 | 孔中的試劑顯色不充分 | 輕輕振蕩板子 |
邊緣效應 | 工作環境溫度不均衡 | 避免將酶標板在變化溫度環境中孵育 |
漂移 | 實驗過程中出現間斷 | 整個(ge) 實驗應連續操作:在實驗開始前將所有標準品和標本做適當的準備 |
試劑沒有按說明書(shu) 平衡至室溫 | 在所有試劑加入孔前,確保它們(men) 已平衡至室溫,除非說明書(shu) 中有另外的要求。 | |
是否可更改試劑盒 所提供的實驗操 作步驟? | | 一般廠商為(wei) 確保zui高的靈敏度和特異性,對試劑盒都進行了優(you) 化,為(wei) 確保每一試劑盒實驗的規範性應按說明書(shu) 操作。 |
是否可混用不同試劑盒中的試劑? | | 不允許。絕大多數試劑在每批試劑盒中是特異的,若有問題可與(yu) 廠家或代理商。 |
是否可增加或減少標本的體(ti) 積。 | | 商品化的試劑盒所需加入的標本體(ti) 積是優(you) 化的,應按說明書(shu) 操作,不建議更改所加標本的體(ti) 積。 |
是否可重確定自己的標準曲線的點? | | 可以。說明書(shu) 上有建議的製備標準曲線時標準品的稀釋度,可改變稀釋倍數和增加曲線的點,但是必須在檢測範圍內(nei) ,高於(yu) 試劑盒中zui高標準品的點和低於(yu) 靈敏度以下的點是無效的。 |